Esame:

Cortisolo basale

Descrizione dell'esame: Dosaggio sierico del cortisolo basale, utilizzato nei protocolli diagnostici e di monitoraggio delle patologie surrenali.
Commenti: Importante come esame complementare, ma una singola misurazione isolata del cortisolo non è indicata per la diagnosi definitiva di iper- o ipoadrenocorticismo.

  • Tipo di campione: siero
  • Specie: canina e felina
  • Volume ideale: 0,7 mL
  • Volume minimo: 0,5 mL
  • Contenitore: Tubetto con tappo rosso o giallo, senza gel separatore
  • Digiuno: dalle 8:00 alle 12:00
  • Criteri di rifiuto: campione non conforme o volume insufficiente

SPEDIZIONE
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Precauzioni:

  • Il cortisolo viene secreto in modo pulsatile, variando in base ai ritmi circadiani, allo stress, allo stato riproduttivo e all'assunzione di diversi farmaci (FANS, antibiotici, glucocorticoidi).
  • I cavalli che hanno ricevuto iniezioni intra-articolari possono presentare livelli bassi o non rilevabili per settimane o mesi.
  • L'interpretazione deve sempre tenere conto dei segni clinici e degli esami di conferma (ACTHst, LDDST).

Metodo di analisi
Immunodosaggio chemiluminescente (CLIA).

Esame:

Cortisolo basale e post-ACTH: diagnosi

Descrizione dell'esame: Dosaggio del cortisolo sierico a digiuno (T0) e dopo stimolazione con ACTH (T1).
Commenti: Esame principale per la diagnosi di ipoadrenocorticismo (morbo di Addison) e per la valutazione della riserva surrenale in caso di sospetto ipercortisolismo (sindrome di Cushing).

  • Tipo di campione: siero
  • Specie: canina e felina
  • Volume ideale: 0,7 ml per ciclo
  • Volume minimo: 0,5 mL per ciclo
  • Contenitore: Tubetto con tappo rosso o giallo, senza gel separatore
  • Digiuno: dalle 8:00 alle 12:00
  • Criteri di rifiuto: campione non conforme o mancanza di identificazione dei tempi (T0 e T1)

SPEDIZIONE
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Identificare chiaramente i tubi basali (T0) e post-ACTH (T1).

  • Ipoadrenocorticismo (morbo di Addison): Livelli bassi di cortisolo basale e post-ACTH confermano una insufficienza surrenalica.

  • Ipercortisolismo (sindrome di Cushing): I cani sani possono presentare livelli basali di cortisolo variabili, ma nella maggior parte dei cani affetti da sindrome di Cushing si osserva una risposta post-ACTH aumentata.

  • I risultati devono sempre essere valutati alla luce dei segni clinici, dell'anamnesi e degli esami complementari.

Metodo di analisi
Immunodosaggio chemiluminescente (CLIA).

Esame:

Cortisolo post-ACTH: diagnosi

Descrizione dell'esame: Dosaggio del cortisolo sierico effettuato 1 ora dopo la somministrazione di ACTH sintetico (T1).
Commenti: Test fondamentale per la valutazione della riserva surrenale, specialmente in caso di sospetto di ipoadrenocorticismo (morbo di Addison).

  • Tipo di campione: siero
  • Specie: canina e felina
  • Volume ideale: 0,7 mL
  • Volume minimo: 0,5 mL
  • Contenitore: Tubetto con tappo rosso o giallo, senza gel separatore
  • Digiuno: dalle 8:00 alle 12:00
  • Criteri di esclusione: campione non conforme o mancanza di una chiara indicazione dell'ora (T1)

SPEDIZIONE
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  • Livelli bassi o non rilevabili di cortisolo post-ACTH confermano l'ipoadrenocorticismo.

  • Deve sempre essere interpretato insieme al cortisolo basale (T0) e in relazione al quadro clinico.

METODO DEL TEST
Immunodosaggio chemiluminescente (CLIA).

Esame:

Cortisolo post-trilostano

Descrizione del test: Dosaggio sierico del cortisolo effettuato da 2 a 4 ore dopo la somministrazione di trilostano.
Commenti: Utilizzato esclusivamente per il monitoraggio dell'efficacia terapeutica di Vetoryl® (trilostano) nei cani affetti da iperadrenocorticismo (sindrome di Cushing).

  • Tipo di campione: siero
  • Specie: canina e felina
  • Volume ideale: 0,7 mL
  • Volume minimo: 0,5 mL
  • Contenitore: Tubetto con tappo rosso o giallo, senza gel separatore
  • Digiuno: dalle 8:00 alle 12:00
  • Criteri di esclusione: campione incompatibile, prelievo effettuato al di fuori dell'intervallo raccomandato dopo la somministrazione del trilostano

SPEDIZIONE
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  • Controllo adeguato: livelli di cortisolo compresi nell'intervallo di riferimento specifico per il monitoraggio con trilostano.

  • Valori bassi: rischio di ipoadrenocorticismo iatrogeno (è necessaria una riduzione della dose).

  • Valori elevati: possibile sottodosaggio, malassorbimento o resistenza al farmaco.

  • L'interpretazione deve sempre tenere conto dei segni clinici, delle dosi somministrate e degli orari esatti dei prelievi.

METODO DEL TEST
Immunodosaggio chemiluminescente (CLIA).

Esame:

Cortisolo basale e post-ACTH

Descrizione dell'esame: Dosaggio del cortisolo sierico a digiuno (T0) e dopo stimolazione con ACTH (T1).
Commenti: Test di scelta per la diagnosi di ipoadrenocorticismo e la valutazione della risposta surrenale in caso di sospetto ipercortisolismo.

  • Tipo di campione: siero
  • Specie: canina e felina
  • Volume ideale: 0,7 ml per ciclo
  • Volume minimo: 0,5 mL per ciclo
  • Contenitore: Tubetto con tappo rosso o giallo, senza gel separatore
  • Digiuno: dalle 8:00 alle 12:00
  • Criteri di rifiuto: campione non conforme o mancanza di identificazione dei tempi (T0 e T1)

INVIO
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Identificando chiaramente i tubuli basali (T0) e post-ACTH (T1).

  • Morbo di Addison: valori bassi al basale e post-ACTH confermano l'ipoadrenocorticismo.
  • Cushing: una risposta esacerbata all'ACTH suggerisce un ipercortisolismo; nei cani normali la risposta è variabile, pertanto sono necessarie una correlazione clinica e ulteriori esami.

METODO DEL TEST
Immunodosaggio chemiluminescente (CLIA).

Esame:

Cortisolo post-ACTH

Descrizione del test: Dosaggio sierico del cortisolo effettuato 1 ora dopo la somministrazione di ACTH sintetico (T1).
Commenti: Fondamentale per valutare la riserva surrenale, specialmente nei protocolli diagnostici di Addison e Cushing.

  • Tipo di campione: siero
  • Specie: canina e felina
  • Volume ideale: 0,7 mL
  • Volume minimo: 0,5 mL
  • Contenitore: Tubetto con tappo rosso o giallo, senza gel separatore
  • Digiuno: dalle 8:00 alle 12:00
  • Criteri di esclusione: campione incompatibile o non identificato come tempo post-ACTH (T1).

SPEDIZIONE
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  • Un livello di cortisolo post-ACTH molto basso conferma la malattia di Addison.

  • Valori elevati possono far pensare alla sindrome di Cushing, ma devono essere interpretati tenendo conto dei valori basali e di altri esami di conferma.

METODO DEL TEST
Immunodosaggio chemiluminescente (CLIA).

Esame:

Cortisolo prima della somministrazione di trilostano e 3 ore dopo la somministrazione di trilostano

Descrizione del test: Dosaggio sierico del cortisolo prima (T0) e circa 3 ore dopo la somministrazione di trilostano.
Commenti: Protocollo specifico per il monitoraggio dell'efficacia terapeutica di Vetoryl® (trilostano) nei cani affetti da iperadrenocorticismo.

  • Tipo di campione: siero
  • Specie: canina e felina
  • Volume ideale: 0,7 ml per ciclo
  • Volume minimo: 0,5 mL per ciclo
  • Contenitore: Tubetto con tappo rosso o giallo, senza gel separatore
  • Digiuno: dalle 8:00 alle 12:00
  • Criteri di rifiuto: campione non conforme, identificazione errata dei tempi o prelievo effettuato al di fuori dell'intervallo raccomandato dopo la somministrazione del farmaco.

SPEDIZIONE
Seguire passo passo la nostra Pocket Guide.
Identificando chiaramente i tubi T0 (pre) e T3h (post-trilostano).

  • Controllo adeguato: cortisolo entro i valori di riferimento previsti per il monitoraggio con trilostano.

  • Valori bassi: rischio di ipoadrenocorticismo iatrogeno.

  • Valori elevati: può indicare una dose insufficiente, un malassorbimento o una resistenza al farmaco.

  • Tenere sempre conto dei segni clinici, del dosaggio e dell'ora esatta di somministrazione del trilostano.

Metodo di analisi
Immunodosaggio chemiluminescente (CLIA).

Esame:

Fenobarbital

Descrizione dell'esame: Dosaggio sierico del fenobarbital per il monitoraggio terapeutico in cani e gatti sottoposti a trattamento anticonvulsivante.
Note: I livelli sierici devono essere mantenuti entro l'intervallo terapeutico per garantire l'efficacia nel controllo delle crisi e la sicurezza del trattamento.

  • Tipo di campione: siero
  • Specie: canina, felina
  • Volume ideale: 0,7 mL
  • Volume minimo: 0,5 mL
  • Contenitore: Tubetto con tappo rosso o giallo, senza gel separatore
  • Digiuno: dalle 8:00 alle 12:00
  • Criteri di scarto: campione emolizzato, con gel separatore o non idoneo al test.

SPEDIZIONE
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  • All'interno dell'intervallo terapeutico: un adeguato controllo delle crisi epilettiche.

  • Sotto lo striscione: rischio di efficacia insufficiente.

  • Superiore alla fascia: rischio di tossicità (sedazione eccessiva, epatotossicità).
    L'interpretazione deve tenere conto della durata dell'uso, della dose somministrata, del momento del prelievo rispetto alla somministrazione e dei segni clinici del paziente.

Metodo di analisi
Immunodosaggio chemiluminescente (CLIA).

Esame:

SUPPRESSIONE CON DEXAMETASONE 2000 – 2 CAMPIONI (T0h / T8h) – CLIA

Descrizione dell'esame: Test di soppressione con desametasone con protocollo a 2 campioni, utilizzato nella diagnosi dell'iperadrenocorticismo (sindrome di Cushing).


Note: Il protocollo prevede un prelievo basale (T0h) e un nuovo prelievo 8 ore dopo la somministrazione di desametasone (T8h). Valuta la capacità di soppressione dell'asse ipotalamo-ipofisi-surrene.

  • Tipo di campione: siero

  • Specie: Canina

  • Volume ideale: 1 mL per campione

  • Volume minimo: 1 mL per campione

  • Contenitore: Tubo con tappo rosso o giallo

  • Criteri di rifiuto: campione non conforme, indicazione errata dell'ora di prelievo o volume insufficiente

L'assenza di soppressione del cortisolo dopo la somministrazione di desametasone è compatibile con l'iperadrenocorticismo.
I risultati devono essere interpretati insieme ai segni clinici, agli esami di imaging e ad altri test ormonali.

Metodo di analisi
Test immunochimio-luminescente (CLIA) – Immulite 2000.

Esame:

SUPPRESSIONE CON DEXAMETASONE 2000 – 3 CAMPIONI (T0h / T4h / T8h) – CLIA

Descrizione dell'esame: Test di soppressione con desametasone con protocollo a 3 campioni, indicato per l'indagine e la diagnosi differenziale dell'iperadrenocorticismo.


Note: Comprende il prelievo basale (T0h), a 4 ore (T4h) e a 8 ore (T8h) dalla somministrazione di desametasone, consentendo una valutazione più dettagliata del profilo di soppressione del cortisolo.

  • Tipo di campione: siero

  • Specie: Canina

  • Volume ideale: 1 mL per campione

  • Volume minimo: 0,5 mL per campione

  • Contenitore: Tubo con tappo rosso o giallo

  • Criteri di rifiuto: campione non conforme o errata indicazione degli orari di prelievo

L'andamento del cortisolo nei livelli intermedi e finali aiuta a distinguere tra iperadrenocorticismo ipofisario e surrenale. L'interpretazione deve sempre tenere conto del contesto clinico e degli esami complementari.

Metodo di analisi
Test immunochimio-luminescente (CLIA) – Immulite 2000.

Esame:

SUPPRESSIONE POST-DEXAMETASONE 2000 – CLIA

Descrizione dell'esame: Dosaggio del cortisolo sierico dopo somministrazione di desametasone.


Note: Selezionare questo esame esclusivamente per campioni prelevati dopo l'uso di desametasone, qualora non sia necessario valutare il valore basale nella stessa richiesta.

  • Tipo di campione: siero

  • Specie: Canina

  • Volume ideale: 1 mL

  • Volume minimo: 0,5 mL

  • Contenitore: Tubo con tappo rosso o giallo

  • Criteri di esclusione: campione non idoneo o mancanza di informazioni sul precedente uso di desametasone

I valori del cortisolo post-desametasone devono essere interpretati in base al protocollo clinico utilizzato. Non sostituisce i test completi di screening o differenziazione quando indicati.

Metodo di analisi
Test immunochimio-luminescente (CLIA) – Immulite 2000.

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